30 de Outubro - Quarta-feira
INTRODUÇÃO A PRÁTICA DE WESTERN BLOT - 6 VAGAS ESGOTADO
Ministrantes: Dra. Marina Batista e MSc Carlos R. Almeida Jr
LOCAL: ICB, bloco L3, sala 167 (Laboratório de Sinalização Celular de patógenos).
Tópicos a serem abordados: - Preparo de gel de SDS-page; corrida de amostras; Coloração de gel; processo de transferência -gel para membrana de nitrocelulose; coloração com ponceau; bloqueio; incubação com anticorpos primário e secundário (IgG ligado a peroxidase); revelação de membrana.
Metodologia: Aula dinâmica diretamente no laboratório de forma a integrar a teoria e a prática durante a execução da técnica de WB. Apostila interativa para anotações durante o curso.
GENÔMICA SUBTRATIVA NA BUSCA DE ALVOS DE DROGA E CANDIDATOS VACINAIS - 10 VAGAS ESGOTADO
Ministrantes: Dr. Marcus Vinícius Canário Viana, MSc. Lucas Gabriel Rodrigues Gomes, BSc. Eduarda Guimarães Sousa
LOCAL: ICB, bloco F2, sala 254
Tópicos a serem abordados: Genômica subtrativa, Vacinologia reversa, Busca de alvos de droga, Imunoinformática
Metodologia: Uso de técnicas básicas em bioinformática para buscar alvos de droga e candidatos vacinais no genoma de patógeno.
RT-qPCR NA AVALIAÇÃO DA REGULAÇÃO TRANSCRICIONAL GÊNICA: TEORIA E PRÁTICA - 12 VAGAS ESGOTADO
Ministrante: Dr. Renato Elias Moreira Júnior
LOCAL: ICB, bloco G4, sala 23
Tópicos a serem abordados: Fundamentos de Biologia Molecular; Princípios da PCR em tempo real; Vantagens da qPCR em relação a outras técnicas; Preparação e desenho experimental para placa de qPCR; Sistemas de detecção de fluorescência; Métodos de quantificação relativa e absoluta e cálculos associados; Análise de dados, estatística e confecção de gráficos; Aplicações científicas e clínicas.
Metodologia: O curso será conduzido em formato de aulas expositivas dialogadas, complementadas por componente prático. As práticas incluirão análise de resultados, aplicação de testes estatísticos e elaboração de gráficos. Para participação efetiva, é necessário que cada aluno disponha de um computador com o software Excel instalado, permitindo a execução de análises durante o curso.
PRINCÍPIOS DAS TÉCNICAS DE SEQUENCIAMENTO ILLUMINA E OXFORD NANOPORE - 30 VAGAS
Ministrante: MSc. Daniel Costa Queiroz
LOCAL: ICB, Auditório 3
Tópicos a serem abordados: Introdução ao Sequenciamento de Ácidos Nucleicos: Conceitos básicos de sequenciamento de DNA e RNA. Importância do sequenciamento na pesquisa e diagnóstico em biologia molecular e medicina. Metodologia Illumina: Princípios do sequenciamento pela tecnologia Illumina. Etapas do processo, incluindo preparação de bibliotecas, amplificação, sequenciamento e análise de dados. Vantagens e limitações da tecnologia Illumina. Metodologia Oxford Nanopore: Fundamentos do sequenciamento baseado em nanoporos pela tecnologia Oxford Nanopore. Comparação com a abordagem Illumina, destacando diferenças metodológicas. Exploração das vantagens e desafios associados ao uso da tecnologia Nanopore. Análise de Dados de Sequenciamento: Introdução aos principais conceitos e ferramentas utilizadas na análise de dados de sequenciamento. Discussão sobre estratégias de pré-processamento, alinhamento, variant calling e interpretação dos resultados. Comparação das abordagens de análise de dados para as tecnologias Illumina e Nanopore.
Metodologia: Aulas teóricas expositivas e demonstrações práticas. Discussões em grupo para esclarecer dúvidas e trocar experiências
ENSINO DE GENÉTICA: ALÉM DE MENDEL, ALÉM DO DNA - 30 VAGAS
Ministrante: Dra. Maria de Nazaré Klautau Guimarães
LOCAL: ICB, bloco G2, sala 75
Tópicos a serem abordados: Abordar pontos para reflexão sobre o conhecimento científico atual e a prática docente no ensino médio e na formação inicial e continuada de professores. Analisar os distanciamentos e as aproximações, em relação ao conhecimento científico atual, das características humanas utilizadas no ensino. Realizar a atividade prática da sensibilidade gustativa à feniltiocarbamida (PTC) e discutir sua utilização no ensino médio e superior.
Metodologia: Exposição dialogada e atividade prática/discussão da sensibilidade gustativa à PTC.
COMO NAVEGAR NO GENOMA?: EXPLORE DEZENAS DE DADOS GENÔMICOS PÚBLICOS ATRAVÉS DO UCSC GENOME BROWSER - 35 VAGAS
Ministrantes: Dra. Daniela Alves Pereira, MSc. Rahyssa Rodrigues Sales
LOCAL: ICB, bloco B2, sala 162
Tópicos a serem abordados: Genoma humano; Regulação da expressão gênica; Elementos regulatórios; Consórcio ENCODE; Como identificar regiões candidatas a regulatórias no genoma humano e possíveis implicações em doenças.
Metodologia: Exposição teórica sobre os conceitos e abordagem prática utilizando o navegador do genoma de forma online.
BIOQUÍMICA EVOLUTIVA NO ESTUDO DE MUTAÇÕES - 60 VAGAS
Ministrante: Dr. Lucas Bleicher
LOCAL: Laboratório de informática, ICB, bloco M1
Tópicos a serem abordados: Construção de grandes alinhamentos de domínios e proteínas, análises de conservação e coevolução em homólogos, introdução à análise de estruturas de proteínas, interpretação de mutações nãosinônimas.
Metodologia: Aulas expositivas demonstrando a utilização de bases de dados de sequências e estruturas de proteínas, ferramentas de alinhamento e análise estrutural e cálculo de conservação e coevolução
TRANSTORNO DO ESPECTRO DO AUTISMO: GENÉTICA, AMBIENTE E EPIGENÉTICA - 300 VAGAS
Ministrantes: Dra. Maria Raquel Carvalho, Dr. Vitor Geraldi Haase
LOCAL: ICB, Auditório 4
Tópicos a serem abordados: TEA: conceitualização, epidemiologia A arquitetura do traço no TEA (ou seja. Causas genéticas, ambientais e epigenéticas)
Metodologia: Serão ministradas aulas teóricas e oportunizadas as dicussões sobre os aspectos abordados. As aulas terão 40 minutos, prevendo-se 10 minutos para discussão ao final de cada aula.
Aula 1 – O que é o TEA? - Prof. Vitor Geraldi Haase, Depto Psicologia, UFMG
Aula 2- Neurobiologia do TEA – Prof. Vitor Geraldi Haase
Aula 3 – TEA, aspectos genéticos – Profa. Maria Raquel Carvalho, Depto Genética, Ecologia e Evolução, UFMG
Aula 4 – Ambiente e epigenética do TEA – Profa. Maria Raquel Carvalho
INTRODUÇÃO À CULTURA DE CÉLULAS: TÉCNICAS E APLICAÇÕES - VAGAS ILIMITADAS
Ministrantes: MSc. Flávia Santiago, MSc. Nayara Mendes
LOCAL: ICB, Auditório 2
Tópicos a serem abordados: 1. Introdução à Cultura de Células: - Definição e importância da cultura de células. - História e desenvolvimento da técnica. - Tipos de células e linhagens celulares utilizadas em cultura. 2. Princípios Básicos da Cultura de Células: - Ambiente de cultura: pH, temperatura, umidade e composição do meio de cultura. - Equipamentos e materiais necessários. - Técnicas de esterilização e assepsia. 3. Cultura de Células Monocamada: - Técnicas de manutenção e passagem de células aderentes. - Controle de qualidade e avaliação da viabilidade celular. 4. Cultura de Células em Suspensão: - Técnicas de cultivo de células em suspensão. - Contagem celular e determinação da densidade celular. 5. Técnicas Especiais em Cultura de Células: - Criopreservação de células. - Diferenciação celular. - Transfecção e expressão gênica. 6. Aplicações da Cultura de Células: - Modelos de doenças in vitro. - Testes de toxicidade e eficácia de fármacos. - Engenharia de tecidos e medicina regenerativa.
Metodologia: O curso será ministrado de forma teórica e prática, com apresentação de slides, demonstrações de técnicas laboratoriais e discussões interativas. Serão fornecidos materiais de apoio, como protocolos de cultivo de células e artigos científicos relevantes.
31 de Outubro - Quinta-feira
PLANEJAMENTO E ANÁLISE DE METILAÇÃO POR HRM - High Resolution Melting - 10 VAGAS ESGOTADO
Ministrante: Dr. Fernando Victor Martins Rubatino
LOCAL: ICB, bloco F2, sala 254
Tópicos a serem abordados:
1- Conceitos básicos (cis-regulação de transcritos, região promotora, metilação da região promotora);
2- Transformação do DNA por bissulfito;
3- Tecnologias nas análises qualitativas e quantitativas da metilação;
4- Princípios termodinâmicos das curvas de dissociação;
5- Análise qualitativa da metilação. Aplicações. Prática: obtenção (desenho) de iniciadores;
6- Análise semi-quantitativa da metilação por HRM;
7- Análise quantitativa indireta da metilação por MS-HRM. Prática: obtenção (desenho) de iniciadores. Determinação da metilação de um fragmento a partir de dados provenientes de curvas de dissociação;
Metodologia: Exposição dialogada (computador, projetor, quadro e pincéis); Prática (computadores para os alunos com acesso à internet)
PRINCIPIOS BÁSICOS PARA EDIÇÃO DE GENOMA UTILIZANDO A TÉCNICA DE CRISPR/CAS9 - 15 VAGAS ESGOTADO
Ministrante: MSc. Pamela Ingrid Alves
LOCAL: ICB, bloco B2, sala 162
Tópicos a serem abordados: O curso irá abordar os conceitos e fundamentos teóricos e práticos da tecnologia CRISPR/Cas9. Descoberta do sistema CRISPR/Cas9 em procariotos. Desenvolvimento do sistema CRISPR/Cas9 para células eucariotas ( conceitos básicos para recombinação homóloga e não homóloga). Desenho passoa-passo de sgRNA. Construção dos vetores para edição. Abordagem ampla sobre as diferentes formas de transformação de células vegetais e/ ou cultura de células. Técnicas utilizadas para confirmar edição (PCR, Digestão enzimática, sequenciamento Sanger)
Metodologia: Para desenho do sgRNA e introdução a construção dos vetores o aluno poderá utilizar o notebook ( instalar o https://www.snapgene.com/snapgene-viewer). Também teremos uma atividade prática no final do curso.
TOXICOLOGIA GENÉTICA: ABORDAGENS E APLICAÇÕES IN HOUSE E REGULATÓRIAS - 20 VAGAS ESGOTADO
Ministrantes: MSc. Nathalia Stephanie Oliveira Nascimento, Dra. Larissa Camila Ribeiro de Souza, Dr. Carlos Alberto Tagliati
LOCAL: ICB, Auditório 4
Tópicos a serem abordados:
Fundamentos da Genética Toxicológica
● Conceitos básicos de genética e toxicologia;
● Importância da genética na resposta aos agentes tóxicos;
● Regulamentação para novos produtos e fármacos;
● Produtos terapêuticos gênicos (vetores virais);
● Genotoxicidade, mutagenicidade e carcinogenicidade;
● Tipos de danos no DNA.
Métodos de Detecção de Genotoxicidade e Mutagenicidade
● In vivo, in vitro e in silico:
● In vivo: o que é e porque não usamos
● Testes de Genotoxicidade in vitro
● Ensaios de micronúcleos e cometa;
● Teste de Ames: princípios e aplicação;
● Muta/Genotoxicidade in silico.
Toxicogenômica
● Introdução à Toxicogenômica;
● Tecnologias e ferramentas;
● Aplicações in house e perspectivas regulatórias;
● Desafios e perspectivas.
Metodologia: O curso será conduzido de forma expositiva, combinando teoria com exemplos práticos e estudos de caso para ilustrar os conceitos apresentados. Recursos visuais, como slides e vídeos, serão utilizados para facilitar a compreensão dos participantes. Além disso, haverá espaço para discussões e perguntas, promovendo a interação entre os participantes e o instrutor. Um ponto destacado do curso será a visita técnica às instalações do Laboratório de Toxicologia (ToxLab) da Faculdade de Farmácia da UFMG, associado à Rede Nacional de Métodos Alternativos ao Uso de Animais (RENAMA), especializado em testes de genotoxicidade e mutagenicidade. Durante a visita, os participantes poderão observar as técnicas laboratoriais em uso e interagir com pesquisadores especializados. Essa experiência prática visa enriquecer a compreensão teórica dos participantes sobre a toxicologia genética.
DNA AMBIENTAL (eDNA) E SUAS APLICAÇÕES NO MONITORAMENTO DA BIODIVERSIDADE - 20 VAGAS ESGOTADO
Ministrantes: Dr. Daniel Cardoso de Carvalho, Dr. Heron Oliveira Hilário, Dr. Gabriel Mendes
LOCAL: ICB, Auditório 3
Tópicos a serem abordados: O minicurso trará como principais tópicos: (1) o uso de diferentes fontes de DNA ambiental (eDNA); (2) desafios metodológicos para amostragem, extração do eDNA/iDNA, amplificação de sequências de DNA suficientemente informativas para a identificação de espécies (minibarcodes) e (3) bancos de referência e análises bioinformática dos dados. Metodologia: O curso será ofertado a partir de apresentações expositivas, utilizando o projetor e o computador para exibir a apresentação. Também faremos uma atividade prática de coleta e fixação de amostras eDNA de água utilizando filtros fechados.
CONSTRUÇÃO DE ÁRVORES FILOGENÉTICAS - 21 VAGAS
Ministrante: MSc. Rosiane de Paula Santos
LOCAL: Laboratório de informática, ICB, bloco M1
As árvores filogenéticas são fundamentais para a compreensão da evolução e da diversidade da vida na Terra. Este minicurso fornecerá uma introdução prática à construção de árvores filogenéticas, que são representações gráficas das relações evolutivas entre diferentes espécies ou grupos de organismos. Durante o curso, os participantes aprenderão os conceitos básicos por trás da construção de árvores filogenéticas, incluindo a seleção e alinhamento de sequências moleculares, métodos de inferência filogenética e interpretação dos resultados. O curso também abordará as aplicações práticas das árvores filogenéticas em diferentes campos da biologia, como taxonomia, ecologia e biologia evolutiva. Ao final do curso, os participantes terão as habilidades necessárias para construir e interpretar suas próprias árvores filogenéticas, utilizando software específico e compreendendo as melhores práticas e os desafios associados a esse processo.
BASES GENÉTICAS DA PERDA GESTACIONAL - 40 VAGAS
Ministrante: Dra. Aline Aparecida Silva Martins
LOCAL: ICB, bloco I3, sala 236
Tópicos a serem abordados: Mutações gênicas e cromossômicas associadas à perda gestacional, principais síndromes associadas à perda gestacional, alterações em genes relacionados ao ciclo celular e à função hematológica, as quais se associam com a perda gestacional.
Metodologia: Curso teórico com apresentação dos fatores genéticos envolvidos e estudo de casos envolvidos.
MEDICINA PERSONALIZADA E GENÉTICA DO CÂNCER- 100 VAGAS
Ministrante: Dr. Renato Santana Aguiar
LOCAL: ICB, Auditório 2
Tópicos a serem abordados:
• Mecanismos moleculares da tumorogenese e resistência à fármacos.
• Identificação de biomarcadores no diagnóstico, origem, prognóstico e tratamento do câncer.
• Utilização da biópsia líquida e suas aplicações.
• Integração das ÔMICAS (genômica, transcriptômica e proteômica) na medicina personalizada do câncer.
Metodologia: Aulas expositivas com base em evidências científicas atualizadas. Estudos de casos clínicos para contextualização e aplicação prática dos conceitos.
ASPECTOS ÉTICOS E LEGAIS DO USO DE ANIMAIS EM ATIVIDADES DE ENSINO E PESQUISA CIENTIFICA - VAGAS ILIMITADAS
Ministrante: Dra. Adriana Abalen Martins Dias
CANCELADO
Tópicos a serem abordados:
1-Introdução à Ciência de Animais de Laboratório
1.1-Visão histórica do uso de animais em experimentação e desafios
1.2- Modelos experimentais: critérios de escolha e delineamento experimental
2- Aspectos Legais e Éticos
2.1-Legislação e regulamentações nacionais e internacionais
2.2- Princípios éticos na experimentação animal
2.3- O CONCEA
2.4- As Comissões de Ética no Uso de Animais
2.5- Métodos alternativos ao uso de animais na pesquisa e no ensino
3- Uso de roedores na pesquisa científica:
3.1- Significado e importância do padrão sanitário e genético de roedores utilizados em pesquisa científica
3.2- Noções básicas de estrutura física e ambiente para criação, manutenção e utilização de roedores padronizados em atividades de pesquisa.
3.3- O Biotério Central da UFMG
Metodologia: Aula teórica expositiva interativa utilizando recursos como jogos, debates e vídeos.
